Лаборатория
флуоресцентного биоимиджинга

Основные направления исследований
  • Метаболизм опухолевых клеток. Оптический метаболический имиджинг на основе эндогенной флуоресценции метаболических кофакторов. Разработка методов диагностики на основе автофлуоресценции
  • Оксигенация опухолей. Оценка кислорода с помощью фосфоресцентного время-разрешенного имиджинга и кислород-чувствительных красителей
  • Физико-химические параметры опухолевых клеток – внутриклеточный рН, вязкость мембран. Визуализация рН и микровязкости с помощью флуоресцентных сенсоров
  • Генетически-кодируемые флуоресцентные белки и сенсоры для изучения механизмов опухолевого роста и действия лекарств. Фототоксичные белки как фотосенсибилизаторы для фотодинамической терапии рака
  • Разработка технологий индивидуальной оценки лекарственной чувствительности опухолей пациентов и прогнозирования эффективности терапии. Химиорезистентность и ее механизмы
  • Опухолевое микроокружение. Роль фибробластов, коллагена, микробиома в опухолевой прогрессии. Оценка состояния коллагена с помощью микроскопии генерации второй гармоники
Избранные публикации

1. Lukina M., Shimolina L., Kiselev N. et al. Interrogation of tumor metabolism in tissue samples ex vivo using fluorescence lifetime imaging of NAD(P)H // Methods Appl Fluoresc. 2019. 8(1). 014002. doi: 10.1088/2050-6120/ab4ed8.

2. Lukina M.M., Dudenkova V.V., Shimolina L.E. et al. In Vivo Metabolic and SHG Imaging for Monitoring of Tumor Response to Chemotherapy // Cytometry Part A. 2019. 95(1). 47-55. doi: 10.1002/cyto.a.23607.

3. Shimolina L., Gulin A., Khlynova A. et al. Development of resistance to 5-fluorouracil affects membrane viscosity and lipid composition of cancer cells // Methods Appl Fluoresc. 2022. 10(4). doi: 10.1088/2050-6120/ac89cd.

4. Lukina M.M., Dudenkova V.V., Ignatova N.I. et al. Metabolic cofactors NAD(P)H and FAD as potential indicators of cancer cell response to chemotherapy with paclitaxel // Biochim Biophys Acta Gen Subj. 2018. 1862. 1693-1700 doi: 10.1016/j.bbagen.2018.04.021.

5. Shimolina L.E., Gulin A.A., Paez-Perez M. et al. Mapping cisplatin-induced viscosity alterations in cancer cells using molecular rotor and fluorescence lifetime imaging microscopy // J Biomed Opt. 2020. 25(12). 126004. doi: 10.1117/1.JBO.25.12.126004.

6. Parshina Y.P., Komarova A.D., Bochkarev L.N. et al. Simultaneous Probing of Metabolism and Oxygenation of Tumors In Vivo Using FLIM of NAD(P)H and PLIM of a New Polymeric Ir(III) Oxygen Sensor // Int J Mol Sci. 2022. 23(18). 10263. doi: 10.3390/ijms231810263.

7. Lukina M., Yashin K., Kiseleva E. et al., Label-Free Macroscopic Fluorescence Lifetime Imaging of Brain Tumors // Frontiers in Oncology. 2021. 11. 1781. doi: 10.3389/fonc.2021.666059.

8. Shirmanova M.V., Gorbachev D.A., Sarkisyan K.S. et al. FUCCI-Red: a single-color cell cycle indicator for fluorescence lifetime imaging // Cell Mol Life Sci. 2021. 78(7). 3467-3476. doi: 10.1007/s00018-020-03712-7.

9. Druzhkova I., Nikonova E., Ignatova N. et al. Effect of Collagen Matrix on Doxorubicin Distribution and Cancer Cells’ Response to Treatment in 3D Tumor Model // Cancers. 2022. 14. 5487. doi: 10.3390/cancers14225487.

10. Shirshin E.A., Shirmanova M.V., Gayer A.V. et al. Label-free sensing of cells with fluorescence lifetime imaging: the quest for metabolic heterogeneity // PNAS. 2022. 119(9). e2118241119. doi: 10.1073/pnas.2118241119.

Сотрудники
Контакты
г. Нижний Новгород, ул. Медицинская, 1
Тел.: +7 (831) 465-56-72
Почта: niibmt@pimunn.ru